Universität Wien
Achtung! Das Lehrangebot ist noch nicht vollständig und wird bis Semesterbeginn laufend ergänzt.

330009 UE Biochemisches Praktikum (Parallelkurs) (2008W)

Biochemisches Praktikum (für Ernährungswissenschafter, Teil der Biochemischen Übungen)

Prüfungsimmanente Lehrveranstaltung

Zusammenfassung

1 Hüttinger
2 Goldenberg

An/Abmeldung

Gruppen

Gruppe 1

von 12:00 bis 18:30 Praktikumssaal 1,2und 3 des Inst.Med.Chemie
Start: 6.10.2008 Kurs A und Kurs B; Einführung im Gr. HS 12.00-13.00 Uhr, dann ab 13.00; Saal 3 Eingang Türkenstr. 2
nähere Info unter: http://homepage.univie.ac.at/manfred.huettinger/nutrition.htm

Sprache: Deutsch

Lehrende

Termine

Zur Zeit sind keine Termine bekannt.

Gruppe 2

von 12:00 bis 18:30 Praktikumssaal 1,2und 3 des Inst.Med.Chemie
Start: 6.10.2008 Kurs A und Kurs B; Einführung im Gr. HS 12.00-13.00 Uhr, dann ab 13.00; Saal 3 Eingang Türkenstr. 2
nähere Info unter: http://homepage.univie.ac.at/manfred.huettinger/nutrition.htm

Sprache: Deutsch

Lehrende

Termine

Zur Zeit sind keine Termine bekannt.

Information

Ziele, Inhalte und Methode der Lehrveranstaltung

Allgemeines Verhalten im Labor, Führung von Protokollen; Datenerfassung und Auswertung, Fehlerquellen, zufällige und systematische Fehler, Streuung, Pr.: Statistische Analyse photometrischer Messserien (Mehrfachbestimmung), Statistische Erhebung der Präzision; Chromatographischen Methoden, Pr.: Dünnschichtchromatographie von Aminosäuren, Molekularsieb-Gelchromatographie, Entsalzung eines Proteins durch Gelfiltration; Elektrophoretische Trennungen, Pr.: Serumproteinelektrophorese, DNA-Gelelektrophorese (Trennung von PCR-Amplifikaten und Restriktionsverdauen); Proteinanalytik, Pr.: Bestimmung des isoelektrischen Punktes einer Casein- bzw. Albuminlösung, Gesamt-Proteinbestimmung im Serum; Spektroskopie, Photometrie, Enzymdiagnostik, Pr.: Bestimmung der Michaelis-Menten-Konstante, Ermittlung der Sättigungskonzentration und der maximalen Umsatzgeschwindigkeit (Auswertung mittels Kurvenanpassung am PC), Enzymatische Ethanolbestimmung und Einfluss von Hemmstoffen, (statistische Auswertung am PC), Amylaseaktivität im Serum, Lipasebestimmung, Glucosebestimmung in normalen und hyperglykämischen Proben mittels Reflocheck; Immunologische Methoden, Pr.: Nachweis von Milchallergen mittels ELISA, Isotopen-Markierung und Nachweismethoden; Pr.: Hormonstatus T3, T4, FT3, FT4 durch Radioimmunassay; Osmose, Diffusion, Dialyse, Pr.: Erythrocytenhämolyse in hyper/iso/hypo-tonen Lösungen; Molekularbiologie, cDNA-Klonierung, Produktion von Proteinen mittels Gentechnik-Methoden, Pr.: DNA-Isolierung aus Gemüse, Nachweis von GVO Konstrukten in Nahrungsextrakten mit Polymerasekettenreaktion; Nachweis der Einbauorientierung eines in Bluescript klonierten DNA Stückes; Theorie und Praxis der Zentrifugation, Zellkulturtechniken, Mikroskopie;

Art der Leistungskontrolle und erlaubte Hilfsmittel

Mindestanforderungen und Beurteilungsmaßstab

Erfahrung aneignen wie Daten produziert und evaluiert werden, Entwicklung und Erfahren der Durchführung praktischer Arbeitsschritte, Interpretation der Ergebnisse, Kennenlernen einiger Standardprozeduren im Biochemischen Labor

Prüfungsstoff

Literatur


Zuordnung im Vorlesungsverzeichnis

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Letzte Änderung: Fr 31.08.2018 08:57